Исследования в клинических лабораториях на вирусы и инфекции

В случае вспышки заболевания следует рассмотреть возможность идентификации изолятов Candida до видового уровня у госпитализированных пациентов и амбулаторных пациентов из группы высокого риска, как это определено группой по управлению инцидентом, если это еще не является рутинной процедурой.

Руководство

Исследования в клинических лабораториях

Обновлено 21 августа 2025 г.

Дрожжи, ранее известные как Candida auris, были переклассифицированы как Candidozyma auris после таксономической ревизии 2023 года.

Примечание: числа в круглых скобках указывают на ссылки, которые можно найти в разделе «Ссылки».

Рекомендации

Как минимум, проведите идентификацию видов Candida на видовом уровне:

  • при изоляции от:
    • инвазивные участки
    • отделения интенсивной терапии
    • расширенная помощь [сноска 1] и другие условия стационарного лечения, определяемые на основе местной оценки риска [сноска 2] и политики скрининга.
  • когда рассматривается вопрос о лечении для определения тактики эмпирического ведения пациента.

Проведите организационную оценку рисков для выявления пробелов в лабораторном надзоре, которые могут привести к тому, что резервуары C. auris останутся незамеченными.

В случае вспышки заболевания следует рассмотреть возможность идентификации изолятов Candida до видового уровня у госпитализированных пациентов и амбулаторных пациентов из группы высокого риска, как это определено группой по управлению инцидентом, если это еще не является рутинной процедурой.

Как минимум, необходимо идентифицировать виды Candida из инвазивных участков, а также из поверхностных участков кожи пациентов, находящихся на лечении в условиях расширенного ухода и других условиях (определяемых на основе местной оценки риска [сноска 2] и политики скрининга), включая отделения интенсивной терапии.

Опыт расследований вспышек заболеваний в Великобритании показал, что задержки в выявлении случаев приводят к передаче Clostridium auris среди пациентов. Необходимо провести организационную оценку рисков для выявления пробелов в лабораторном надзоре, которые могут способствовать сохранению необнаруженных резервуаров C. auris . Кроме того, следует рассмотреть вопрос о выявлении и обработке клинических образцов высокого риска от пациентов, переведенных из британских медицинских учреждений, где произошла вспышка C. auris , или от тех, кто в течение предыдущего года находился на ночь в медицинском учреждении за границей, чтобы не пропустить заражение C. auris .

Для скрининга и клинических образцов лабораторная диагностика в основном проводится с помощью микологического культивирования, при этом в некоторых центрах Великобритании для скрининга используется полимеразная цепная реакция ( ПЦР ) на прямых образцах (17). Точность диагностики улучшилась после разработки хромогенных сред, специально предназначенных для C. auris , и достижений в области спектральных баз данных систем масс-спектрометрии с матрично-ассоциированной лазерной десорбцией и ионизацией по времени пролета (MALDI-TOF MS). Время выполнения и чувствительность диагностики могут быть улучшены за счет использования молекулярных технологий, особенно для образцов с высокой вероятностью колонизации или инфицирования C. auris до проведения теста .

Идентификация на основе культуры

Рекомендации

Для подтверждения идентификации C. auris необходимо провести полную идентификацию предполагаемых изолятов с использованием масс-спектрометрии MALDI-TOF или надежного молекулярного метода .

Срок хранения изолята C. auris составляет от 3 до 6 месяцев в зависимости от местных ресурсов.

Идентификация C. auris традиционно представляет собой сложную задачу при использовании обычных лабораторных методов диагностики. При микроскопическом исследовании C. auris неотличим от большинства других видов Candida. Это почкующиеся дрожжи, дающие отрицательный результат теста на образование ростковых трубочек. Однако некоторые штаммы могут образовывать рудиментарные псевдогифы на кукурузном агаре.

Candida auris может расти при температуре до 42 градусов Цельсия (°C), при этом оптимальная температура инкубации составляет около 40°C. Эта характеристика может помочь отличить C. auris от многих других видов Candida при культивировании на агаре Сабуро, особенно от тех, за которые его чаще всего ошибочно принимают, например, Candida haemulonii.

Для обнаружения и идентификации C. auris был разработан ряд новых хромогенных сред (2, 18). Такие среды могут быть особенно полезны в качестве скринингового инструмента для выявления подозрительных колоний в смешанных культурах, включая наличие C. albicans и других видов, отличных от albicans, в зависимости от среды. Инкубацию следует продолжать до полного развития хромогенной окраски.

Подтвердите наличие предполагаемых колоний C. auris , выделенных из хромогенных сред, с помощью MALDI-TOF MS или молекулярного секвенирования внутреннего транскрибируемого спейсера (ITS) или домена D1/D2 28S рДНК. Это рекомендуется из-за сходства цвета и морфологии колоний между C. auris и некоторыми другими видами Candida (19). При необходимости подтверждение идентификации можно получить в UKHSA MRL . Отправьте чистые изоляты на скошенных средах Сабуро с соответствующей формой .

Рекомендуется хранить образцы изолятов в течение 3–6 месяцев, поскольку период между внутрибольничными случаями передачи инфекции обычно достаточно длительный, в зависимости от местных ресурсов. Это позволит в дальнейшем, при необходимости, провести дальнейшую характеристику и исследование путей передачи инфекции.

Биохимическая идентификация

Рекомендация

Не используйте биохимические методы для идентификации C. auris .

Использование биохимических методов идентификации C. auris не рекомендуется из-за потенциальной возможности ошибочной идентификации или невозможности идентификации организма. Лабораториям рекомендуется проверить свои базы данных на наличие доступных в настоящее время биохимических тестов, включающих C. auris . Если C. auris отсутствует в базе данных, существует риск ошибочной классификации C. auris как ряда других видов и родов Candida при использовании биохимических тестов (чаще всего как C. haemulonii, C. famata, C. lusitaniae, Rhodotorula glutinis или Saccharomyces cerevisiae).

Идентификация методом MALDI-TOF MS

Рекомендация

Убедитесь, что установлена ​​соответствующая версия спектральной библиотеки для обеспечения точной идентификации с помощью MALDI-TOF MS.

Последние достижения в области спектральных баз данных для двух основных платформ, используемых в лабораториях для MALDI-TOF MS, Bruker MALDI Biotyper и bioMérieux VITEK MS, позволили точно идентифицировать C. auris в культуре. Рекомендуемые пороговые значения для показателей MALDI связаны с улучшенной идентификацией.

Для эффективной идентификации требуется предварительная экстракция муравьиной кислоты (могут использоваться протоколы экстракции, частичной или полной экстракции) (20).

Молекулярная идентификация

Молекулярные технологии для идентификации C. auris могут использоваться в лабораториях в дополнение к методам, основанным на культивировании. Преимущество прямых молекулярных методов скрининга заключается в том, что они не зависят от культивирования. Они быстрее, чувствительнее и быстро масштабируются при обнаружении передачи (21). Это потенциально улучшает расследования групп по инфекционному контролю . Большинство стандартных ПЦР- тестов на Candida (как коммерческих, так и разработанных внутри лаборатории) не нацелены на C. auris и не могут быть использованы для обнаружения или идентификации этого организма. Однако были разработаны как коммерческие, так и разработанные внутри лаборатории ПЦР- тесты в реальном времени для C. auris , которые обеспечивают методы для быстрой идентификации культуры и прямого тестирования клинических и экологических мазков.

Тестирование чувствительности к противогрибковым препаратам

Рекомендации

Проведите тестирование чувствительности к противогрибковым препаратам инвазивных изолятов и изолятов от пациентов, нуждающихся в лечении. Это включает повторные изоляты от пациентов с подозрением на неэффективность лечения.

Изоляты C. auris , проявляющие устойчивость к неазольным противогрибковым препаратам, следует направлять в референс-лабораторию для подтверждения и дальнейшей характеристики.

Рекомендуется проводить тестирование чувствительности всех изолятов C. auris к противогрибковым препаратам, соответствующим локализации инфекции и клинической картине. Как минимум, приоритет следует отдавать инвазивным изолятам и изолятам от пациентов, нуждающихся в лечении, включая повторные изоляты от пациентов с подозрением на неэффективность лечения. Минимальный набор препаратов для инфекций кровотока должен включать амфотерицин B, эхинокандин и вориконазол. 

Для Candida auris не установлены пороговые значения минимальной ингибирующей концентрации ( МИК ). Различия в МИК в зависимости от клады и высокая доля изолятов с вероятной приобретенной резистентностью еще больше усложняют ситуацию. В настоящее время для интерпретации результатов тестирования чувствительности Candida albicans к противогрибковым препаратам применяются установленные пороговые значения для Candida albicans в зависимости от используемого метода тестирования. Такой подход в настоящее время используется UKHSA MRL в отсутствие конкретных пороговых значений, утвержденных либо Институтом клинических и лабораторных стандартов ( CLSI ), либо Европейским комитетом по тестированию чувствительности к противомикробным препаратам ( EUCAST ).

В тех случаях, когда местное тестирование чувствительности к противогрибковым препаратам недоступно, референтный центр UKHSA MRL и другие аккредитованные службы могут провести тестирование чувствительности к амфотерицину B, флуконазолу, вориконазолу, посаконазолу, исавуконазолу, анидулафунгину, каспофунгину, микафунгину и флуцитозину. В MRL используется метод микроразведения в бульоне CLSI с подтверждением «необычных/неожиданных» профилей с помощью E-теста. Если изолят оказывается устойчивым ко всем этим препаратам, UKHSA MRL также может провести тестирование на чувствительность к нистатину и тербинафину.

В связи с ограниченными возможностями, для определения чувствительности к антибиотикам в референтный лабораторию по определению чувствительности следует направлять в нее только изоляты, полученные из инвазивных участков или от пациентов, нуждающихся в лечении . Это также относится к повторным изолятам от пациентов с подозрением на неэффективность лечения. Диагностическим лабораториям рекомендуется развивать возможности по проведению тестирования чувствительности к антимикробным препаратам на местном уровне для обеспечения своевременного и эффективного ведения пациентов.

Большинство изолятов C. auris , описанных во всем мире, устойчивы к флуконазолу, при этом используются различные пороговые значения. Определение чувствительности к амфотерицину B остается сложной задачей, поскольку значения МИК часто близки к клиническим пороговым значениям. Множественная лекарственная устойчивость была продемонстрирована с различной частотой, в том числе к другим азолам, амфотерицину B, эхинокандинам и флуцитозину. Однако распределение МИК варьируется в зависимости от географического положения и клады.

Используя предварительные пороговые значения, установленные Центрами по контролю и профилактике заболеваний США ( CDC ) для эпидемиологических целей, примерно 90% изолятов устойчивы к флуконазолу, 30% — к амфотерицину B и менее 5% — к эхинокандинам в США (22). Важно отметить, что эти пороговые значения предназначены в первую очередь для наблюдения и могут не иметь прямого клинического значения на индивидуальном уровне. Соответствующие значения для изолятов из Индии составляют от 90 до 95%, от 7 до 37% и менее 2% соответственно. Некоторые изоляты также были идентифицированы как устойчивые к 4 классам противогрибковых препаратов (23). Хотя устойчивость к эхинокандинам остается редкостью, она все чаще выявляется в связи с расширением использования этого препарата в качестве терапии первой линии.

Опыт, полученный в рамках программы UKHSA MRL, показывает, что до настоящего времени в Великобритании было обнаружено очень мало штаммов с множественной лекарственной устойчивостью. Все изоляты были устойчивы к флуконазолу и часто обладали перекрестной устойчивостью к другим азолам, с различной устойчивостью к полиенам (приблизительно 20% для амфотерицина B) и эхинокандинам (приблизительно 10%). Развитие устойчивости к различным противогрибковым препаратам наблюдалось у ранее чувствительных изолятов, особенно в контексте длительного противогрибкового лечения. Устойчивость к неазольным препаратам должна быть подтверждена референс-лабораторией.

На сегодняшний день штаммы, распространенные в Великобритании, остаются чувствительными к местным препаратам нистатину и тербинафину, и возможно, что для лечения любых будущих штаммов с множественной лекарственной устойчивостью можно будет рассмотреть схему лечения, включающую пероральный прием тербинафина.

Типирование клад и полногеномное секвенирование ( WGS )

Рекомендации

Для поддержки расследования вспышки заболевания следующие изоляты следует направить на полногеномное секвенирование :

  • Контрольные изоляты из новых центров
  • Первые 3-4 изолята любой вспышки, появившиеся в течение 3-месячного периода друг от друга.
  • Изоляты из затяжных вспышек, особенно после видимого контроля, используются для определения того, продолжается ли передача инфекции или произошла новая форма передачи.

Как типирование клад, так и полногеномное секвенирование ( WGS ) — это молекулярные методы, используемые для анализа штаммов C. auris , однако они различаются по своему охвату, разрешению и назначению. Типирование клад — это метод, используемый для классификации изолятов C. auris на отдельные клады или генетические группы. Клады соответствуют географически различным субпопуляциям, которые были связаны с разными регионами мира. Типирование клад предоставляет ограниченную генетическую информацию и не дает подробных сведений об индивидуальных различиях штаммов внутри клады.

Полногеномное секвенирование (WGS) позволяет проводить высокоточный генетический анализ штаммов, включая идентификацию механизмов устойчивости к противогрибковым препаратам, филогенетические исследования, а также поддержку эпидемиологического надзора и управления вспышками заболеваний. Однако анализ цепочек передачи C. auris ограничен внутрихозяйственной изменчивостью и высокой клональностью на уровне клады, что может затруднять определение точных сетей передачи.

В лаборатории UKHSA MRL полногеномное секвенирование (WGS) является услугой с ограниченным спектром , и направлять к исследованию следует только изоляты, соответствующие вышеуказанным критериям.

  1. Условия оказания расширенной медицинской помощи определены в Приложении 2 к Рамочной программе действий UKHSA по сдерживанию распространения энтеробактерий, продуцирующих карбапенемазы .  ↩
  2. При оценке риска следует учитывать: факторы риска для пациентов (включая группы высокого риска), факторы, специфичные для организации (например, подразделения высокого риска), местную и региональную эпидемиологию, возможности и потенциал лабораторий, инфраструктуру инфекционного контроля , наличие ресурсов и готовность к вспышкам заболеваний.  ↩  ↩ 2
Вернуться наверх
VikiVisa

VikiVisa-Викивиза

Руководство

Ссылки

Обновлено 21 августа 2025 г.

  1. Лю Ф.Х., З.Д., Чжао Х.М., Чжао В.Н., Фэн З.Х., Юрко А., Альвасель С., Бокхаут Т., Бенш К., Хуэй Ф.Л., Бай Ф.Ю., Ван Ц.М. «Филогеномный анализ клады Candida auris-Candida haemuli и родственных таксонов в семействе Metschnikowiaceae, а также предложение 13 новых родов, 55 новых комбинаций и 9 новых видов». Persoonia — Молекулярная филогения и эволюция грибов 2024: том 52, страницы 22–43.
  2. Джонс К.Р., Нейл К., Борман А.М., Бадд Э.Л., Камминс М., Фрай К. и др. «Лабораторное исследование, лечение, профилактика и контроль инфекций, вызванных Candida auris: обзор литературы для подготовки национальных рекомендаций в Англии в 2024 году». Журнал медицинской микробиологии 2024: том 73, выпуск 5.
  3. Сато К., Макимура К., Хасуми Ю., Нисияма Ю., Учида К., Ямагучи Х. «Candida auris sp. nov., новый вид аскомицетных дрожжей, выделенный из наружного слухового канала пациента японской больницы». Микробиология и иммунология, 2009: том 53, выпуск 1, страницы 41–44.
  4. Фишер М.К., Деннинг Д.В. «Список приоритетных патогенных микроорганизмов, вызываемых грибами, ВОЗ — это поворотный момент». Nature Reviews Microbiology 2023: том 21, выпуск 4, страницы 211–212.
  5. Данг Т., Бассетт Дж., Сури А., Натт А., Хонза Х., Ретана Д. и др. «Передача панрезистентной и эхинокандин-резистентной Candida auris между медицинскими учреждениями во время пандемии COVID-19». Американский журнал инфекционного контроля, 2022: том 50, 7-е приложение, S2-S3.
  6. Бишвал М., Рудрамурти С.М., Джайн Н., Шамант А.С., Шарма Д., Джайн К. и др. «Контроль над возможной вспышкой инфекции Candida auris: уроки, извлеченные из многочисленных мер». Журнал больничных инфекций, 2017: том 97, выпуск 4, страницы 363–370.
  7. Сансом С.Е., Гуссин Г.М., Шоени М., Сингх Р.Д., Адил Х., Белл П. и др. «Быстрое загрязнение окружающей среды Candida auris и мультирезистентными бактериальными патогенами вблизи пациентов с колонизацией». Клинические инфекционные заболевания 2024: том 78, выпуск 5, страницы 1276–1284.
  8. Бержерон Г., Блох Д., Мюррей К., Кратц М., Партон Х., Аккельсберг Дж. и др. «Колонизация Candida auris после выписки в амбулаторные условия: Нью-Йорк, 2017–2019 гг.» Открытый форум по инфекционным заболеваниям, 2021: том 8, выпуск 1, страница aa620
  9. Россоу Дж., Островски Б., Адамс Э., Гринко Дж., Макдональд Р., Валлабханени С. и др. «Факторы, связанные с колонизацией и передачей Candida auris в учреждениях квалифицированного сестринского ухода с аппаратами ИВЛ, Нью-Йорк, 2016–2018 гг.» Клинические инфекционные заболевания 2021: 72, выпуск 11, страницы e753–e60
  10. Ху С., Чжу Ф., Цзян В., Ван И., Цюань И., Чжан Г. и др. «Ретроспективный анализ клинических характеристик инфекции Candida auris во всем мире с 2009 по 2020 год». Frontiers in Microbiology 2021: том 12, стр. 658, 329
  11. Альварес-Морено К.А., Моралес-Лопес С., Родригес Г.Дж., Родригес Дж.И., Роберт Э., Пикот С. и др. «Смертность от кандидемии у C. auris выше, чем у других видов Candida: миф или реальность?» Журнал грибов (Базель), 2023: том 9, выпуск 4
  12. Форгач Л., Борман А.М., Препост Э., Тот З., Кардош Г., Ковач Р. и др. «Сравнение патогенности in vivo 4 клад Candida auris в мышиной модели инфекции кровотока при нейтропении». Emerging Microbes and Infections 2020: том 9, выпуск 1, страницы 1160–1169.
  13. Борман А.М., Джонсон Э.М. «Candida auris в Великобритании: внедрение, распространение и контроль» PLoS Pathogens 2020: том 16, выпуск 7, статья e1008563
  14. Эйр Д.В., Шеппард А.Е., Маддер Х., Мойр И., Морони Р., Куан Т.П. и др. «Вспышка Candida auris и ее контроль в отделении интенсивной терапии». New England Journal of Medicine, 2018: том 379, выпуск 14, страницы 1322–1331.
  15. Шеленц С., Хаген Ф., Роудс Дж. Л., Абдолрасули А., Чоудхари А., Холл А. и др. «Первая внутрибольничная вспышка глобально распространяющейся Candida auris в европейской больнице». Антимикробная резистентность и контроль инфекций 2016: том 5, выпуск 35.
  16. Таори СК, Хоньонгва К, Хайден И, Атукорала ГДА, Леттерс А, Файф А и др. «Вспышка Candida auris: смертность, меры вмешательства и стоимость поддержания контроля». Журнал инфекционных заболеваний, 2019: том 79, выпуск 6, страницы 601–611.
  17. Таори СК, Роудс Дж, Хоньонгва К, Сендрой А, Смит М, Борман АМ и др. «Первый опыт внедрения ПЦР в реальном времени для эпидемиологического надзора за Candida auris в Великобритании: выявление множественных случаев заражения двумя международными кладами и улучшение результатов лечения пациентов». Журнал больничных инфекций, 2022: том 127, страницы 111–120
  18. Борман А.М., Фрейзер М., Джонсон Э.М. «CHROMagar™ Candida Plus: новая хромогенная агаровая среда, позволяющая быстро идентифицировать Candida auris». Медицинская микология 2021: том 59, выпуск 3, страницы 253–258.
  19. де Йонг А.В., Дилеман С., Карбиа М., Мохд Тап Р., Хаген Ф. «Эффективность двух новых хромогенных сред для идентификации мультирезистентной Candida auris по сравнению с другими коммерчески доступными составами». Журнал клинической микробиологии, 2021: том 59, выпуск 4.
  20. Абдолрасули А., Фрейзер М.А. «Идентификация и профилирование Candida auris с помощью масс-спектрометрии MALDI-ToF». Методы молекулярной биологии, 2022: том 2517, страницы 21–32.
  21. Лич Л., Чжу И., Чатурведи С. «Разработка и валидация ПЦР- анализа в реальном времени для быстрого обнаружения Candida auris в образцах, полученных в рамках эпидемиологического надзора». Журнал клинической микробиологии, 2018: том 56, выпуск 2.
  22. Лайман М., Форсберг К., Секстон Д.Дж., Чоу Н.А., Локхарт С.Р., Джексон Б.Р. и др. «Ухудшение распространения Candida auris в Соединенных Штатах, 2019–2021 гг.» Анналы внутренней медицины, 2023: том 176, выпуск 4, страницы 489–495.
  23. Jacobs SE, Jacobs JL, Dennis EK, Taimur S, Rana M, Patel D и др. «Candida auris обладает панрезистентностью к 4 классам противогрибковых препаратов». Antimicrobial Agents and Chemotherapy 2022: том 66, выпуск 7, статья e0005322
  24. Брукс Р.Б., Уолтерс М., Форсберг К., Вает Э., Вудворт К., Валлабханени С. «Candida auris у пациента из США с карбапенемазопродуцирующими микроорганизмами и недавней госпитализацией в Кении». Еженедельный отчет о заболеваемости и смертности за 2019 год: том 68, выпуск 30, страницы 664–666.
  25. Корнели О.А., Бассетти М., Каландра Т., Гарбино Дж., Куллберг Б.Дж., Лортолари О. и др. «Глобальные рекомендации по диагностике и лечению кандидоза: инициатива ECMM в сотрудничестве с ISHAM и ASM» Lancet Infectious Diseases (опубликовано онлайн 13 февраля 2025 г. до выхода печатной версии) (доступно 1 марта 2025 г.)
  26. Паппас П.Г., Кауфман К.А., Андес Д.Р., Клэнси К.Дж., Марр К.А., Остроски-Зейхнер Л. и др. «Клинические рекомендации по лечению кандидоза: обновление 2016 года от Американского общества инфекционных заболеваний». Клинические инфекционные заболевания 2016: том 62, выпуск 4, страницы e1–e50.
  27. Лионакис М.С., Чоудхари А. «Инфекции, вызванные Candida auris». New England Journal of Medicine, 2024: том 391, выпуск 20, страницы 1924–1935.
  28. Саймон С.П., Ли Р., Сильвер М., Андраде Дж., Тариан Б., Фу Л. и др. «Сравнительные результаты инфекций кровотока, вызванных Candida auris: многоцентровое ретроспективное исследование случай-контроль». Клинические инфекционные заболевания 2023: том 76, выпуск 3, страницы e1436–e1443.
  29. Уэйк Р.М., Аллебон-Солт П.Е., Джон Л.Л.Х., Касволл Б.А., Говендер Н.П., Бен-Ами Р. и др. «Оптимизация лечения инвазивного кандидоза: аргументы в пользу комбинированной терапии». Открытый форум по инфекционным заболеваниям 2024: том 11, выпуск 6, статья ae072.
  30. Балла Н., Ковач Ф., Балаж Б., Борман А.М., Бозо А., Якаб А. и др. «Синергическое взаимодействие каспофунгина в сочетании с позаконазолом против планктонных клеток и биопленок Candida auris дикого типа и мутантного типа FKS». Антибиотики 2022: том 11, выпуск 11 (без нумерации страниц).
  31. Фахим Х., Чоудхари А., Пракаш А., Ваэзи А., Даннауи Э., Мейс Дж. Ф. и др. «Взаимодействие эхинокандинов с триазолами in vitro против мультирезистентной Candida auris». Antimicrobial Agents and Chemotherapy 2017: том 61, выпуск 11.
  32. Джаггаварапу С., Берд Э.М., Вайс Д.С. «Синергизм микафунгина и амфотерицина B против Candida auris». The Lancet Microbe 2020: том 1, выпуск 8, страницы e314–e315.
  33. Джон Л.Л.Х., Томсон Д.Д., Биканик Т., Хёнигль М., Браун А.Дж.П., Харрисон Т.С. и др. «Повышенная эффективность анидулафунгина при применении в комбинации с маногепиксом или 5-флуцитозином против Candida auris in vitro». Antimicrobial Agents and Chemotherapy 2023: статья e0164522
  34. Лепак А.Дж., Чжао М., Берков Э.Л., Локхарт С.Р., Андес Д.Р. «Фармакодинамическая оптимизация лечения инвазивной инфекции Candida auris». Противомикробные препараты и химиотерапия 2017: том 61, выпуск 8.
  35. О’Брайен Б., Лян Дж., Чатурведи С., Джейкобс Дж. Л., Чатурведи В. «Пан-резистентная Candida auris: нью-йоркский субкластер, чувствительный к комбинациям противогрибковых препаратов» Lancet Microbe 2020: том 1, выпуск 5, страницы e193–e194
  36. Фелтон Т., Троук П.Ф., Хоуп В.В. «Проникновение противогрибковых препаратов в ткани». Обзоры клинической микробиологии, 2014: том 27, выпуск 1, страницы 68–88.
  37. Хэм YY, Льюис JS, Томпсон GR. «Резафунгин: новый противогрибковый препарат для лечения инвазивного кандидоза». Future Microbiology 2021: том 16, выпуск 1, страницы 27–36.
  38. Пфаллер МА, Хубанд МД, Ромберг ПР, Бьен ПА, Кастанейра М. «Активность маногепикса и препаратов сравнения в отношении 1435 недавно выделенных грибковых изолятов, собранных в рамках международной программы эпидемиологического надзора (2020 г.)» Антимикробные препараты и химиотерапия 2022: том 66, выпуск 11, статья e0102822
  39. Васкес Дж. А., Паппас П. Г., Боффард К., Парук Ф., Бьен П. А., Тавадрус М. и др. «Клиническая эффективность и безопасность нового противогрибкового препарата Фосманогепикс у пациентов с кандидемией, вызванной Candida auris: результаты исследования фазы 2». Antimicrobial Agents and Chemotherapy 2023: статья e0141922
  40. Леру С., Жак-Эгрейн Э., Эли В., Легран Ф., Барин-Ле Геллек К., Аурих Б. и др. «Фармакокинетика и безопасность флуконазола и микафунгина у новорожденных с системным кандидозом: рандомизированное открытое клиническое исследование». British Journal of Clinical Pharmacology, 2018: том 84, выпуск 9, страницы 1989–1999.
  41. Хоуп В.В., Микиене Д., Петрайтис В., Петрайтис Р., Келахер А.М., Хьюз Дж.Е. и др. «Фармакокинетика и фармакодинамика микафунгина при экспериментальном гематогенном кандидозном менингоэнцефалите: значение для терапии эхинокандинами у новорожденных». Журнал инфекционных заболеваний, 2008: том 197, выпуск 1, страницы 163–171.
  42. Кентерс Н., Кирнан М., Чоудхари А., Деннинг Д. В., Пеман Дж., Сарис К. и др. «Контроль Candida auris в медицинских учреждениях: итоги совещания экспертов Международного общества антимикробной химиотерапии». Международный журнал антимикробных препаратов, 2019: том 54, выпуск 4, страницы 400–406.
  43. Абдолрасули А., Армстронг-Джеймс Д., Райан Л., Шеленц С. «Эффективность дезинфицирующих средств in vitro, используемых для деколонизации кожи и дезинфекции окружающей среды во время вспышки Candida auris в больнице» Mycoses 2017: том 60, выпуск 11, страницы 758–763
  44. Мур Г., Шеленц С., Борман А.М., Джонсон Э.М., Браун К.С. «Эстетицидная активность химических дезинфицирующих средств и антисептиков против Candida auris». Журнал больничных инфекций, 2017: том 97, выпуск 4, страницы 371–375.
  45. Шерри Л., Рамадж Г., Кин Р., Борман А., Джонсон Э.М., Ричардсон М.Д. и др. «Способность к образованию биопленок у высоковирулентной, мультирезистентной Candida auris». Новые инфекционные заболевания 2017: том 23, выпуск 2, страницы 328–331.
  46. Омардиен С., Теска П. «Дезинфекция кожи и твердых поверхностей от Candida auris: что мы знаем сегодня». Frontiers in Medicine 2024: том 11, страница 1, 312, 929
  47. Ганнум М., Эррада Дж., Маккормик Т.С., Лонг Л. «Новый трансдермальный метод лечения колонизации кожи Candida auris». Антимикробные препараты и химиотерапия 2021: том 65, выпуск 5, страницы e02303–e02320.
  48. Вэй Л., Ли И., Ли С., Бянь Л., Вэнь Ч., Ли М. «Повязка, пропитанная хлоргексидином, для профилактики осложнений, связанных с центральным венозным катетером: систематический обзор и метаанализ» BMC Infectious Diseases 2019: том 19, выпуск 1, страница 429
  49. Гарсия-Бустос В., Салаверт М., Руис-Гайтан А.С., Кабаньеро-Навалон М.Д., Сигона-Джангреко И.А., Пеман Дж. «Клиническая прогностическая модель кандидемии, вызванной Candida auris, у ранее колонизированных тяжелобольных пациентов». Клиническая микробиология и инфекция 2020: том 26, выпуск 11, страницы 1507–1513.
  50. Шастри П.С., Шанкарнараян С.А., Оберой Дж., Рудрамурти С.М., Ваттал С., Чакрабарти А. «Кандидемия, вызванная Candida auris, в отделении интенсивной терапии: проспективное обсервационное исследование для оценки эпидемиологии, факторов риска и исхода». Журнал интенсивной терапии, 2020: том 57, страницы 42–48.
  51. Джонсон М.Д., Льюис Р.Е., Доддс Эшли Э.С., Остроски-Зейхнер Л., Заутис Т., Томпсон Г.Р. и др. «Основные рекомендации по рациональному использованию противогрибковых препаратов: заявление Образовательного и исследовательского консорциума исследовательской группы по микозам». Журнал инфекционных заболеваний, 2020: том 222, приложение 3, страницы S175–S98.
  52. Уитни Л., Аль-Гусейн Х., Гласс С., Кох М., Кламмер М., Болл Дж. и др. «Эффективность программы рационального использования противогрибковых препаратов в лондонской университетской больнице в период с 2010 по 2016 год». Журнал антимикробной химиотерапии, 2019: том 74, выпуск 1, страницы 234–241.
  53. Микаллеф С., Аширу-Оредопе Д., Хансрадж С., Деннинг Д.В., Агравал С.Г., Мануэль Р.Дж. и др. «Исследование программ рационального использования противогрибковых препаратов в Англии». Журнал медицинской микробиологии, 2017: том 66, выпуск 11, страницы 1581–1589.
  54. Харт Э., Нгуен М., Аллен М., Кларк К.М., Джейкобс Д.М. «Систематический обзор влияния мер по рациональному использованию противогрибковых препаратов в Соединенных Штатах». Анналы клинической микробиологии и противомикробных препаратов, 2019: том 18, выпуск 1, страница 24.
  55. Касерес Д.Х., Форсберг К., Уэлш Р.М., Секстон Д.Дж., Локхарт С.Р., Джексон Б.Р. и др. «Candida auris: обзор рекомендаций по выявлению и контролю в медицинских учреждениях». Журнал грибов, 2019: том 5, выпуск 4.
  56. Ахмад С., Альфузан В. «Candida auris: эпидемиология, диагностика, патогенез, чувствительность к противогрибковым препаратам и меры по борьбе с распространением инфекций в медицинских учреждениях». Микроорганизмы 2021: том 9, выпуск 4.
  57. Чакрабарти А., Суд П. О возникновении, распространении и устойчивости Candida auris: переломные моменты, связанные с хозяином, патогеном и окружающей средой. Журнал медицинской микробиологии, 2021: том 70, выпуск 3.
  58. Ядав А., Сингх А., Ван И., Харен М.Х.В., Сингх А., де Гроот Т. и др. «Динамика колонизации и передачи Candida auris среди пациентов с хроническими респираторными заболеваниями, госпитализированных в пульмонологическую больницу в Дели, Индия: сравнительный анализ полногеномного секвенирования и микросателлитного типирования». Журнал грибов, 2021: том 7, выпуск 2.
  59. Уэлш Р.М., Бентц М.Л., Шамс А., Хьюстон Х., Лайонс А., Роуз Л.Дж. и др. «Выживание, персистенция и изоляция новой мультирезистентной патогенной дрожжевой культуры Candida auris на пластиковой поверхности в медицинских учреждениях». Журнал клинической микробиологии, 2017: том 55, выпуск 10, страницы 2996–3005.
  60. де Алмейда-младший, Франсиско Э.К., Хаген Ф., Брандао И.Б., Перейра Ф.М., Преста Диас П.Х. и другие, «Появление Candida auris в Бразилии в отделении интенсивной терапии COVID-19» Журнал Fungi 2021: том 7, выпуск 3
  61. Декер Б.К., Клэнси К.Дж. «Шнурки для бейджей как источник вспышки Candida auris: при исследовании окружающей среды не забывайте о гигиене рук». Critical Care Medicine 2021: страницы 714–716.
  62. Нобрега де Алмейда Х-младший, Брандао ИБ, Франциско Э.К., де Алмейда СЛР, де Оливейра Диас П., Перейра Ф.М. и другие. «Подмышечные цифровые термометры увеличили вспышку Candida auris с множественной лекарственной чувствительностью среди пациентов с COVID-19 в Бразилии» Микозы 2021: том 64, выпуск 9, страницы с 1062 по 1072
  63. Паттерсон К.А., Патель А., Ньюсхолм В., Тан М., Эджворт Дж.Д., Уинколл Д. и др. «Тканевые шнурки как источник периодической передачи Candida auris в отделении интенсивной терапии». Critical Care Medicine 2021: страницы 697–701.
  64. CDC . « Руководство по инфекционному контролю: Candida auris 2024 » (цитировано 11 августа 2024 г.)
  65. Вебер Д.Дж., Рутала В.А., Сикберт-Беннетт Э. «Возникающие инфекционные заболевания: акцент на профилактике инфекций, выживаемость в окружающей среде и восприимчивость к бактерицидам: SARS-CoV-2, оспа и Candida auris». Американский журнал инфекционного контроля, 2023: том 51, выпуск 11s, страницы a22–a34.
WikiVisa

WikiVisa-Викивиза

Обсуждение закрыто.

Звёзд: 1Звёзд: 2Звёзд: 3Звёзд: 4Звёзд: 5 (1 оценок, среднее: 5,00 из 5)
Загрузка...